1樓：液壓hoog賈超
樓主,是血清蛋白電泳醋酸纖維薄膜電波吧?
這是電泳分析中最常見的問題，多數是由於血清滴加不均勻或滴加過多，也有因薄膜質量不合要求所致。點樣這一步非常關鍵，一定要按操作步驟進行。首先選擇質勻、孔細、染料吸附少的薄膜充分浸透緩衝液至溼度均勻無干白點。
然後將濾紙吸去薄膜表面的多餘水份，使薄膜含水量飽和均勻，這樣才能防止薄膜表面液體含量不均，水份移動而引起標本移位。點樣前注意關閉門窗和風扇，因空氣流通快可使標本和水份蒸發而影響電泳圖形。點樣要力求做到均勻迅速，在實踐中把加樣器幹沾血清，改為沾取標本前先浸入蒸餾水中沾溼用吸水紙吸乾後再沾血清，這樣加樣器內均勻沾取血清的效果較幹沾為佳。
本人的建議是：在條件允許的前提下，同步跑兩個，做對照實驗！考慮點樣時可能影響結果的因素來進行，這是最笨拙的方法，但是這樣才能更好的瞭解問題的原因和各個因素的影響程度~！
參考文獻
王祖植.血清蛋白醋酸纖維素薄膜電泳實驗條件及影響因素探索.上海醫學檢驗雜誌，1987；2(3)：140
延邊大學農學院 學生之拙見
參考資料
簡述血清蛋白電泳的基本操作過程有哪些
2樓：淵源
【 操作步驟】
1. 點樣 將醋酸纖維薄膜 (2.5cm×8cm) 一條，浸於巴比妥緩衝液，待完全浸透後，取出輕輕夾於濾紙中，吸去多餘的溶液，再於薄膜的無光澤面的一端 2.
0cm 處，用小玻片蘸取少許血清，垂直印於膜上，待血清滲入薄膜後，以無光澤面向下，兩端用數層浸溼的濾紙 ( 或紗布 ) 貼緊，加蓋，平衡 2 ～ 3min ，然後通電。
2. 通電 一般電壓用 110 ～ 140v ，電流約 0.4 ～ 0.6ma / cm ，時間 45 ～ 60min 。
3. 染色 關閉電源後立即將膜取出，放入染色液中浸染 2 ～ 3min ，然後移入漂洗液中漂洗數次，至蛋白條帶清晰，背景無色為止。
4. 定量 取試管 6 支，編號依次為 0 (空白)、 a 、 α1 、 α2 、 β 、 γ ，將電泳圖譜亦按 a 、 α1 、 α2 、 β 、 γ 蛋白區帶剪開，分別裝入相應號碼試管中。再在圖譜兩端無蛋白部位剪一條寬約 α1 帶的空白帶放入空白管中。
各管中加 0.4mol/l naoh 4ml ，振搖數次，使染料色澤浸出， 30min 後，在 620nm 波長下進行比色，以空白管校正零點，讀取清蛋白及 α1 、 α2 、 β 及 γ 球蛋白各管的吸光度。
怎麼區分牛血清電泳圖的帶譜,血清蛋白電泳圖譜中怎樣確定各種蛋白質
正常人血清脂蛋白可出現三條區帶，從陰極到陽極依次為 脂蛋白 最深 前 脂蛋白 最淺 及 脂蛋白 比前 脂蛋白略深些 空腹血清在一般電泳譜上無乳糜微粒，所以只出現三條區帶。血清蛋白電泳圖譜中怎樣確定各種蛋白質 血清蛋白電泳圖譜中各種蛋白質是這樣描述的 按順序排列為白蛋白，球蛋白，球蛋白又分為阿爾法1 ...
與濾紙電泳比較，血清蛋白醋酸纖維薄膜電泳有哪些優點
血清蛋白醋酸纖維薄膜電泳與濾紙相比較,有以下優點 1 醋酸纖維素薄膜對蛋白質樣品吸附極少，無 拖尾 現象，染色後背景能完全脫色，各種蛋白質染色帶分離清晰，因而提高了測定的精確性。2 快速省時.由於醋酸纖維素薄膜親水性較濾紙小，薄膜中所容納的緩衝液也較少，電滲作用小，電泳時大部分電流是由樣品傳導的，所...
血清蛋白質種類很多,為什麼電泳結果只有5條區域帶
這是由於m蛋白的化學結構高度均一，因而其電泳遷移率十分一致。如果將這些區帶電泳圖譜掃描，還可計算出異常蛋白的含量和百分比。這種m區帶較多見於 或 區，偶亦可見於 區。m區帶的電泳位置可大致反應出免疫球蛋白的型別，igg型多位於 區至 慢區，iga型多位於 1與 區，igm型多位於 2或 區，igd型...